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產品資料

正常口腔粘膜成纖維細胞

正常口腔粘膜成纖維細胞
  • 如果您對該產品感興趣的話,可以
  • 產品名稱:正常口腔粘膜成纖維細胞
  • 產品型號:BJ-01X10549
  • 產品展商:邦景
  • 產品文檔:無相關文檔
簡單介紹
接收到正常口腔粘膜成纖維細胞,肉眼觀察細胞培養基顏色,顯微鏡觀察細胞生長情況,并對正常口腔粘膜成纖維細胞進行不同倍數拍照(建議收到時的培養瓶拍一張照片,顯微鏡拍收到時的細胞100X,200X各一張)。
產品描述

訂購信息:

英文簡稱:hOMF細胞

產品名稱:正常口腔粘膜成纖維細胞

貨號:BJ-01X10549

規格:口腔;成纖維細胞

形態特性:DMEM

生長特性:貼壁

【培養指南】

對于貼壁細胞,傳代可參考以下方法:

1. 棄去培養上清,用不含鈣、鎂離子的PBS潤洗細胞1-2次。

2. 加2ml消化液(0.25%Trypsin-0.53mM EDTA)于培養瓶中,置于37℃培養箱中消化1-2分鐘,然后在顯微鏡下觀察Ⅱ型肺泡上皮細胞|細胞消化情況,若細胞大部分變圓并脫落,迅速拿回操作臺,輕敲幾下培養瓶后加少量培養基終止消化。

3. 按6-8ml/瓶補加培養基,輕輕打勻后吸出,在1000RPM條件下離心4分鐘,棄去上清液,補加1-2mL培養液后吹勻。

4. 將細胞懸液按1:2到1:5的比例分到新的含8ml培養基的新皿中或者瓶中。

對于懸浮細胞,傳代可參考以下方法:

方法一:收集細胞,1000RPM條件下離心4分鐘,棄去上清液,補加1-2mL培養液后吹勻,將細胞懸液按1:2到1:5的比例分到新的含8ml培養基的新皿中或者瓶中。

方法二:可選擇半數換液方式,棄去半數培養基后,將剩余細胞懸起,將細胞懸液按1:2到1:3的比例分到新的含8ml培養基的新皿中或者瓶中。


【細胞凍存】

待細胞生長狀態良好時,可進行293/HEK-293細胞|細胞凍存。貼壁細胞凍存時,棄去培養基后加入少量胰酶,細胞變圓脫落后,加入約1ml含血清的培養基后加入凍存管中,再添加10%DMSO后進行凍存。懸浮細胞凍存時,應將細胞收集,1000RPM條件下離心4分鐘,少量保存上清液(防止細胞吸走),加入部分新鮮培養基,加入到凍存管中,在凍存管中加入10%DMSO后進行凍存。

【復蘇的原則】

快速融化:必須將凍存在-196℃液氮中的細胞快速融化至37℃,使細胞外凍存時的冰晶迅速融化,避免冰晶緩慢融化時進入細胞形成再結晶,對細胞造成損害。復旦細胞庫各地均??發貨,統一價格,本公司出售的所有細胞僅供科研使用。

細胞培養方法:

1、細胞傳代:細胞密度達到80-90%時即可傳代

①棄去培養上清,用PBS或生理鹽水清洗1-2次;

②加入2ml0.25%胰酶(T25瓶),使胰酶覆蓋整個瓶或皿,蓋好放入培養箱消化;

③1-2min后,顯微鏡下觀察細胞,若大部分細胞回縮且有少量細胞脫落,輕輕吹打下確認消化情況后加入完全培養基終止消化;若細胞還是貼壁,放回培養箱繼續消化至可以輕輕吹打下為止;

④將細胞懸液1000RPM左右條件下離心4min,棄上清;

⑤用新鮮培養基重懸后加入培養瓶或皿中,T25培養瓶加6-8ml培養基;

⑥懸浮細胞直接離心收集,細胞沉淀重懸后分到新培養瓶中。

2、細胞復蘇:

①將凍存管在37℃溫水中快速搖晃融化,時間1min左右,加入4-5ml培養基混勻。

②在1000RPM左右條件下離心4min,棄上清,加1-2ml培養基吹勻,將細胞懸液加入培養瓶中,補加適量培養基。

3、細胞凍存:待細胞生長狀態良好時進行細胞凍存保種

①棄去培養上清,用PBS或生理鹽水清洗1-2次,加入1mL 0.25%胰蛋白酶(T25瓶)

②1-2min后,顯微鏡下觀察細胞,大部分細胞回縮且有少量細胞脫落,輕輕吹打下確認消化情況后加入完全培養基終止消化;

③將細胞懸液1000RPM左右條件下離心4min,棄上清,加1ml凍存液重懸細胞;

④將凍存管放入程序降溫盒,放入-80℃冰箱,4小時后將凍存管轉入液氮罐儲存。

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正常口腔粘膜成纖維細胞番瀉苷C Sennoside C 37271-16-2 10mg

補骨脂素  Psoralen  66-97-7 20mg

小肉湯培養基 the Smallest Broth Medium 250g

改良CCD瓊脂配套試劑 每支添加于100ml(022212)中配成MLST 10支/盒

五味子酚 Schisanhenol 69363-14-0 20mg

2 ug pHP13 pHP13 低溫運輸,-20℃保存

琥珀酸 Butane diacid 110-15-6 200mg

0.5mL dTTP溶液,100mM dTTP Solution -20℃保存

10g 脫氧膽酸 Deoxycholic Acid  室溫干燥保存

5次 一步法97孔板單落質粒DNAout(離心法) One-Step 96 Microwell Plate Colony Plasmid DNAOUT 常溫

SS瓊脂培養基平板 用于沙門氏、志賀氏的選擇性分離培養。(GB) 90mmX20個

25g 羧甲基纖維素鈉鹽 Carboxymethylcellulose Sodium Salt 常溫保存

檢定培養基4號 用于兩性霉素B的效價及殘留的微生物學檢定(中華人民共和國藥典2010版)。 100g

原代細胞分離:

一、細胞培養

1取材 在無菌環境下從機體取出某種組織細胞(視實驗目的而定),經過一定的處理(如消化分散細胞、分離等)后接入培養器血中,這一過程稱為取材。如是細胞株的擴大培養則無取材這一過程。機體取出的組織細胞的培養稱為原代培養。2培養 將取得的組織細胞接入培養瓶或培養板中的過程稱為培養。3凍存及復蘇(可參閱后面有關章節)為了保存細胞,特別是不易獲得的突變型細胞或細胞株,要將細胞凍存。凍存的溫度一般用液氮的溫度-196℃,將細胞收集至凍存管中加入含保護劑(一般為二甲亞砜或甘油)的培養基,以一定的冷卻速度凍存,保存于液氮中。在極低的溫度下,細胞保存的時間幾乎是無限的。復蘇一般采用快融方法,即從液氮中取出凍存管后,立即放入37℃水中,使之在一分鐘內迅速融解。然后將細胞轉入培養器皿中進行培養。

二、原代細胞分離

凡是來源于胚胎、組織器官及外周血,經特殊分離方法制備而來的原初培養的細胞稱之為原代細胞。1懸浮細胞的分離方法組織材料若來自血液、羊水、胸水或腹水的懸液材料,簡單的方法是采用1000r/min的低速離心10分鐘。經離心后由于各種細胞的比重不同可在分層液中形成不同層,這樣可根據需要收獲目的細胞。2實體組織材料的分離方法對于實體組織材料,由于細胞間結合緊密,為了使組織中的細胞充分分散,形成細胞懸液,可采用機械分散法(物理裂解)和消化分離法。

三、細胞增殖檢測技術

目前主要有兩種用于檢測細胞增殖能力的方法。一種是直接的方法,通過直接測定進行分裂

的細胞數來評價細胞的增殖能力。另一種是間接的方法,即細胞活力(cell viability)檢測方法,通過檢測樣品中健康細胞的數目來評價細胞的增殖能力。顯然,細胞活力檢測法并不能終證明檢測樣品中的細胞是否在增殖。如細胞在某一培養條件下會自發啟動凋亡程序,但的干擾可抑制凋亡的發生;這時若采用細胞活力檢測法,顯然可以區分兩種條件下的細胞數量,但我們并不能從干擾組細胞數大于對照組的事實說明可促進細胞增殖的結論。所以直接的證據應該采用方法一。

其中常見檢測:CCK8檢測法 ,MTT檢測法,Brdu檢測法,Edu檢測法,平板克隆形成。

四、細胞周期檢測技術

細胞周期指由細胞分裂結束到下一次細胞分裂結束所經歷的過程,所需的時間叫細胞周期時間。

常用的方法:流式檢測細胞周期,標記有絲分裂百分率法。

五、細胞凋亡檢測

常見檢測方法:流式檢測細胞凋亡,線粒體膜電位,活性氧檢測,Hoechst染色,電鏡,TUNEL。

 


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