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PCR-DNA實驗注意事項

發布時間:2016-08-11

1 加樣方面(混勻,不要有氣泡,管壁上不要有液體) 

2 試劑方面(冷凍,不宜反復凍融超過3次;可分裝) 

3 使用非肝素鈉抗凝劑采血管 

4 實驗室方面(實驗做完注意通風、84清理臺面、紫外線**) 

5 注意污染(平常配試劑管蓋的放置不要污染、加樣時指甲及手套不要碰到管內壁) 

 

實驗操作步驟

1.室溫融解;

2. 血清(或標準品)50ul 加入 50ul 核酸提取液  震蕩混勻10 然后 6000轉瞬間離心一下(等離心機轉速到了接近6000按停止)99度水煮或干浴10分鐘,稍微彈碎;然后13000轉離心10分鐘保留上清液備用 

3.配混合液 

   N*36ul 混合液 + N*0.4ul TAQ酶混勻 (先 震蕩混勻10 然后 6000轉瞬間離心) N為管數,實際上我們要取N+1 因為加樣管壁上會沾液不多配會導致*后一個有誤差 例如有10個樣本則取11*36+11*0.4;) 

4.取上述混合液36.5ul分別加入pcr反應管 不要有氣泡 管壁不要有水珠

5.加樣 4ul上清液 加入pcr  加樣槍在液體里面反復打個7~8  *后在離心機 稍微離一下6000轉瞬間離心 6.上機反應  檢查管壁水珠 氣泡

 

實驗結果方面

1.標準曲線相關系數至少為-0.99  越小越好

2.根據曲線分析結果(曲線是否穩,無波浪)38循環曲線抬頭為陰性

實線抬頭 曲線不抬頭為YMDD變異 (實線---病毒量  虛線---判斷有無變異)

  21個循環值大概為7次方 后面加3.5個循環 減少一個次方  24.5左右為6次方...... 

 

友情提示:上述操作不一定全正確,請自行參考各試劑廠試劑說明書以及檢驗方面相關資料。


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